实验方法原理    通过特异的抗原抗体反应标记上可见的显示物系统来检查细胞及组织上原位抗原或抗体成分的方法。在光学显微镜、荧光显微镜或电子显微镜下观察其性质定位，还可以利用细胞分光光度计、图像分析仪、共聚焦显微镜等进行细胞原位半定量测定。免疫组织化学的显著特点是特异性强。

实验材料    冷冻切片
试剂、试剂盒    一抗；二抗；三抗（*标记的辣根过氧化物酶卵白素）；PBS缓冲液；多聚甲醛；DAB
仪器、耗材    免疫湿盒；滴管；剪刀；进口膜（parafilm）；37度培养箱；移液枪及枪头；酶标笔（PAP）；光学显微镜
实验步骤    
1.  将实验用试剂从4度冰箱取出，自然平衡至室温；
 
2.  将脑片从-20/-80度冰箱中取出，自然平衡至室温。
 
3.  用酶标笔在脑片周围画圈，防止液体在玻片上溢流。
 
4.  4%多聚甲醛固定30 min。
 
5.  0.01M PBS洗，5 minX3次。
 
6.  0.4% Triton-X100/0.01 M PBS 洗10 min X 1次。
 
7.  0.01M PBS洗，5 min X 3次。
 
8.  0.3% H2O2/0.01 M PBS 洗10 min X 1次。
 
9.  0.01M PBS洗，5 min X 3次。
 
10.  以10%山羊血清（1：10，以0.01M PBS稀释），37度恒温箱放置30 min，一般以40 ul/脑片为宜。
 
11.  倾去封闭血清液，略干，加一抗，4度冰箱放置过夜。

12.  0.01M PBS洗，5 min X 3次。
 
13.  加二抗（1：200稀释度），37度恒温箱放置1h，一般以40 ul/脑片。
 
14.  0.01M PBS洗，5 min X 3次。
 
15.  加三抗（1：300稀释度），37度恒温箱放置1h，一般以40 ul/脑片。
 
16.  0.01M PBS洗，5 min X 3次。
 
17.  DAB显色（DAB配置：1 ml水中，加1滴A液，混匀后，加1滴B液，再1滴C液），显色约10 min。

收起 
注意事项    
1.  内源性生物活性及其消除*是一种辅酶，是在脱羧基酶、羧基转换酶等催化的代谢环节中所产生的羧基中间载体，在应用ABC法染色时会与抗*蛋白结合而产生非特异性染色。对含内源性*或*样物质较丰富的组织，在应用ABC法前，应预先以0.01％的抗生素蛋白和0.01％*溶液分别作用20分钟左右，以消除内源性*活性。每次作用后应用PBS洗5分钟，更换3次。
 
此外，zui近已有从链霉抗生素蛋白（streptavidin）由于其分子中不含寡糖及等电点接近中性（6－6.5），故非特异性吸附很低。同时链霉抗生素蛋白可与长臂*及过氧化物酶结合成复合物，此为SABC（streptavidin-Biotin-peroxidase Complex）复合物，用SABC取代ABC进行标记，可提高灵敏度（比ABC高约20倍）及降低非特异性着色。现在SABC已有成品的试剂盒出售。SABC法的操作步骤基本与ABC法相同，只不过要用SABC代替ABC标记，即将SABC试剂盒中的A液、B液各取10微升，加入1 ml的PBS中（临用前配，配好后立即加入切片中）室温孵育30分钟。此外*级抗体和第二级抗体的孵育时间均可缩短至30分钟以内，故SABC法是一个快速、简便、敏感及非特异性着色低的检测方法。

2.  *制剂间相互亲和性差异很大，因此在应用ABC试剂时，应注意厂家和批号，对购进试剂应进行事先预测，以保证实验结果的稳定性。

3.  标记过程中应始终保持组织切片的湿润。
 
4.  在DAB显示液中加入镍等金属离子，以使反应产物呈蓝黑色，并用甲基绿复染核，可加强阳性染色的对比度和提高灵敏度。
 
5.  在用PBS缓冲液冲洗的过程应尽量冲洗*，片子表面不留杂质。

6.  准确配比抗体的浓度，因为浓度过高和过低都不利反应地进行，在滴加抗体的时候，做到用量少而均匀。

7.  DAB是有毒试剂，使用过程中尽量不污染周围环境，并且显色过程中尽量避免DAB见光分解。

8.  滴加每种试剂做到迅速准确，以免片子在反应中干燥。

9.  ABC试剂保存温度以4度为佳，据报告保存达两年之久，仍能获得满意效果，而在-20度，生物活性在短期内即被破坏。