光合作用测定仪器介绍：
该仪器是通过测量植物叶片一定时间内CO2吸收（释放）的量， 并同时测量空气温湿度，叶片温度，光照强度以及同化C02的叶片面积等要素，就可以直接计算出植物的光合速率、蒸腾速率、细胞间CO2浓度和气孔导度等光合作用指标。该仪器具有灵敏度高、反应迅速，抗干扰性强，操作方便，可以进行活体的、连续的测定等突出优点，因而被广泛应用于植物生物化学、生态环境、农业科学等多个领域。
测量方式：闭路测量、开路测量（二选一）
测量项目：
非扩散式红外CO2分析
叶片温度
光合有效辐射（PAR）
叶室温度
叶室湿度
分析计算：
叶片光合（呼吸）速率 
叶片蒸腾速率
细胞间CO2浓度
气孔导度
水分利用率
技术指标：
CO2分析：
加入了温度调节的双波长红外二氧化碳分析器， 测量范围：0-3000ppm，分辨率：0.1ppm； 精度3ppm。二氧化碳测量不受温度变化影响，具有稳定、精度高，反映灵敏，1秒钟之内就可以完成二氧化碳差值采集。
叶室温度：
德国贺利氏高精度数字温度传感器，测量范围：-20-80℃，分辨率：0.1℃，误差±0.2℃
叶片温度：
铂电阻，测量范围：-20-60℃，分辨率：0.1℃，误差±0.2℃
湿度：
瑞士进口高精度数字湿度传感器：
测量范围0-100%，分辨率：0.1%，误差≤ 1%
光合有效辐射（PAR）：
带有修正滤光片的硅光电池
测量范围：0-3000μmolm ㎡/秒 ,精度<1μmolm ㎡/秒. 响应波长范围：400～700nm
流量测量：玻璃转子流量计，流量在0-1.5L范围内任意设定， 误 差：1%，在0.2～1L/ min范围内<±0.2%，气泵流量可根据需要设定，可测量不同气体流量下对光合作用的影响，气体流量稳定。
叶室尺寸：标配尺寸55×20mm，其他尺寸根据客户需求定做
操作环境：温度-20℃—60℃，相对湿度：0-100%（没有水汽凝结） 
电源：DC8.4V锂电池，可连续工作10小时
数据存储：内存16G，可扩张为32G。
数据传输：USB连接电脑可直接导出excel表格数据。
显示：3.5"TFT真彩液晶屏彩色显示器，分辨率 800×480,强光下清晰可见
体积：260×260×130mm
重量：主机3.25kg
产品特点：
多功能：同时测定光合速率、蒸腾速率、胞间二氧化碳浓度、气孔导度和水分利用效率，以及二氧化碳浓度、相对湿度、光合有效辐射和空气温度、叶片温度十项指标
稳定性：加入了温度调节的双波长红外二氧化碳分析器，二氧化碳测量精度不受温度变化影响。气泵流量可根据需要设定，可测量不同气体流量下对光合作用的影响，气体流量稳定。
智能化：多信息的中文菜单显示和光标引导操作，即时将测定过程及终结果屏幕显示、存储
体积小，重量轻，随身携带，单人操作
适用广泛：配有不同类型的叶室（呼吸反应器）能广泛用于大田作物、果树、蔬菜、森木、牧草等多种植物不同形状叶片的测定和土壤、种子、昆虫等呼吸作用
性价比高：价格低廉，使用成本低，维修方便
可选附件：
叶室: (可任选一款)
Ⅰ型：(20×20mm)
Ⅱ型：(55×20mm)
Ⅲ型：(55×10mm)
IV型：直径11.3mm的圆
GPS定位：可附带GPS定位功能，可实时显示测量地点的经纬度
群体同化箱：体积：2升。 其他尺寸可定制
土壤呼吸器：直径100mm，高度200mm
光源：外配即插式LED红蓝光源，可调范围0—3000μmolm ㎡/秒  。光强值可通过仪器设定。可选配红白蓝三色光源，红光660nm,蓝光455nm以及高光效白光。

种子发芽过程包括以下几个主要步骤：①种子吸水，②种子内高分子物质分解为低分子物质，③低分子物质运往生长部位，④胚及胚轴开始生长，⑤形成初的同化器官（主要是子叶）。在上述过程中始终伴随着强烈的呼吸代谢，这是种子发芽所需物质和能量的基础。种子发芽过程具体表现为种子的吸水膨胀、幼胚的萌动和发芽三个阶段。
吸水膨胀阶段：干燥的种子含水量很低，仅占干重的10%以下。细胞液浓度*，渗透压极低。蛋白质呈高度凝胶状态，种子的生命活动维持低限度。当种子浸入水中后，很快吸水膨胀。在细胞内已缩小的液泡也急剧增大；原生质水合程度增加，逐渐由凝胶状态变为溶胶状态。种子对水分的吸收大体可分为两个阶段。*阶段为急剧吸水阶段(初始阶段）。这一阶段的吸水是一个被动过程，与种子的呼吸代谢无关。它是借助于种皮、珠孔等结构的机械吸水过程，吸收的水分主要到达胚的外围组织，因此胚已死亡的无生命种子在这一阶段也具有吸水能力。第二阶段为缓慢吸水阶段(完成阶段）。这一阶段的吸水主要是一个主动过程。吸水的动力来自于胚的活动，吸收的水分主要是供胚的生命活动，吸水速度比较慢。无生命力的种子没有这一吸水阶段。